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iFluor 647 酪胺
简要概述
对于许多免疫组织化学（IHC）应用，传统的酶促扩增程序足以实现足够的抗原检测。但是，有几个因素限制了这些过程的敏感性和实用性。乙酰胺信号放大（TSA）已被证明是一种特别通用且功能强大的酶放大技术，具有很高的测定灵敏度。 TSA拥有HRP在低浓度过氧化氢的存在下将标记的含酪胺底物转化为可与HRP或附近的酪氨酸残基共价结合氧化的高反应性自由基的能力。为了实现大程度的IHC检测，酪胺预先标记有荧光团，使用少量的抗体和杂交探针通过每个过氧化物酶标记的多个酪胺底物的更新而产生信号放大并转化为低丰度靶标的超灵敏检测。在免疫组织化学应用中，源自TSA方法的敏感性增强可以提高一抗稀释度，以减少非特异性背景信号，并且可以克服由于固定步骤或目标表达水平低而导致的免疫标记弱的问题。 iFluor 647酪胺包含明亮的iFluor 647，可使用标准Cy3滤波片组轻松检测到。它是AlexaFluor®647酪胺（AlexaFluor®是ThermoFisher的商标）或其他光谱相似的荧光酪胺缀合物或TSA试剂（例如Cy3酪胺）的替代品。金畔生物是AAT Bioquest的中国代理商，为您提供优质的iFluor 647酪胺。
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产品说明书
样品实验方案
简要概述
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修复/透化细胞或组织
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在封闭缓冲液中添加一抗
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加入结合HRP的二抗
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准备酪胺工作溶液，并在室温下添加到细胞或组织中（5-10分钟）
溶液配制
储备溶液配制
酪胺储备溶液（200X）：
将100 µL DMSO加入小瓶中并充分混合。注意：未使用的酪胺储备溶液可在2-8℃下储存。
工作溶液配制
酪胺工作溶液（1X）：
将100 µL酪胺储备溶液添加到20 mL含有0.003％H2O2的缓冲液中。 注意：可以使用pH = 7.4的Tris Buffer以获得性能。注意：应立即使用Tyramide工作溶液，随用随配。注意： 20 mL溶液适合200次测试。
实验步骤
（该步骤适用于细胞或组织染色）
细胞固定和透化
1.在室温下用3.7％甲醛或低聚甲醛的PBS固定细胞或组织20分钟。
2.用PBS冲洗细胞或组织两次。
3.在室温下用0.1％Triton X-100溶液透化细胞1-5分钟。
4.用PBS冲洗细胞或组织两次。
组织固定，脱石蜡和补液
（根据标准IHC方案对组织进行脱蜡和脱水处理。根据实验方案使用特定溶液进行抗原修复。）
过氧化物酶标记
1.可选：通过在过氧化物酶淬灭溶液（例如3％过氧化氢）中孵育细胞或组织样品10分钟来淬灭内源性过氧化物酶活性，然后在室温下用PBS冲洗两次。
2.可选：如果使用结合HRP的链霉亲和素，建议通过生物素封闭缓冲液封闭内源性生物素。
3.在4°C下用封闭溶液（例如含1％BSA的PBS）封闭30分钟。
4.除去封闭溶液，并添加稀释好的一抗，在室温下放置60分钟或在4°C下放置过夜。
5.用PBS洗涤3次，每次5分钟。
6.将100 µL二级抗体-HRP工作溶液添加到每个样品中，并在室温下孵育60分钟。注意：孵育时间和浓度可以根据信号强度而变化。
7.用PBS洗涤3次，每次5分钟。
酪胺标记
1.准备并向每个样品中加入100 µL的Tyramide工作溶液，并在室温下孵育5-10分钟。 注意：如果观察到非特异性信号，则可以缩短与Tyramide的孵育时间。您应该在不同的孵育时间点使用阳性和阴性对照样品优化孵育时间。或者您可以在工作溶液中使用较低浓度的酪胺。
2.用PBS冲洗3次。
复染和荧光成像
1.根据需要对细胞或组织样本进行复染。AAT提供了一系列核复染色试剂，如表1所示。请按照试剂附带的说明进行操作。
2.加上盖玻片。
3.使用适当的滤波器观察Tyramide的荧光信号。
表1.建议用于核复染色的产品。
| 货号 | 产品名称 | Ex/Em(nm) |
| 17548 | 核蓝 DCS1 | 350/461 |
| 17550 | 核绿 DCS1 | 503/526 |
| 17551 | 核橙 DCS1 | 528/576 |
| 17552 | 核红 DCS1 | 642/660 |